Техника взятия материала с глаз для исследования у детей. Методика выворачивания век

Оснащение для взятия материала с глаз для исследования у детей:
1. Оборудование для окраски роговицы для исключения эпителиального дефекта:
а. Флюоресцирующая краска или полоски.
б. Лампа Вуда или другой источник синего света.

2. Оборудование для получения образца:
а. Местный анестетик (необязательно):
(1) 0,5% тетракаин без консервантов в контейнерах по одной дозе (Alcon Laboratories, Fort Worth, TX, USA).
(2) Лидокаин без консервантов (Elkins-Sinn, Cherry Hill, NJ, USA).
(3) 4% кокаин с 0,5% бензоатом натрия в качестве стабилизатора (Schein Pharmaceuticals, Port Washington, NY, USA), разведенные до 1-2% стерильной водой. Многие местные офтальмологические анестетики содержат консерванты, которые могут угнетать рост бактерий на питательных средах. По этой причине многие врачи предпочитают производить процедуру без анестетика. Тем не менее процедура может быть болезненна у новорожденного. Вышеперечисленные анестетики не имеют в своем составе консервантов или имеющиеся консерванты не угнетают рост бактерий.

б. Стерильные хлопчатые тампоны для выворачивания век (не следует использовать для сбора образцов).

в. Инструмент для взятия образца для микробиологического исследования:
(1) Тампон с кальция альгинатом.
(2) Стерильный аппликатор с кончиком из дакрона полиэстера (Harwood Products Company, Guilford, ME, USA).

При взятии образца с помощью тампона с кальция альгинатом результаты посевов идентичные или лучше по сравнению с забором шпателем или дакроновыми тампонами. Смачивание тампонов в триптиказо-соевом бульоне (Becton Dickenson and Company, Cockeysville, MD, USA) или другой питательной среде улучшает результаты. Однако при использовании шпателей результаты выше, чем при применении тампонов. Шпатели лучше сохраняют эпителиальные клетки конъюнктивы, таким образом, условия для диагностики патогенных микроорганизмов, находящихся внутриклеточно, или включений лучше. Кальция альгинат может влиять на результаты иммунологических исследований, г. Инструмент для соскоба с конъюнктивы:
(1) Шпатель «Kimura Platinum E-109» (Storz Instrument Co., St. Louis, MO, USA).
(2) Назофарингеальный зонд для тампонов с металлической ручкой, изогнутой для соскоба.
(3) Тампоны с кальция альгинатом.

При отсутствии шпателей можно использовать тампон в области хряща века для соскоба эпителиальных клеток. д. Оборудование для приготовления микропрепаратов.
(1) Охлажденные, протравленные предметные стекла.
(2) Штативы для микропрепаратов.
(3) Карандаш или маркер для нанесения пометок.

Метод выворачивания верхнего века

Методика взятия материала с глаз для исследования у детей

1. Окраска роговицы для обнаружения эпителиального дефекта:
а. Инстиллируют очень небольшое количество флюоресцеина в нижний конъюнктивальный мешок путем легкого прикосновения разорванной пленкой с полоской флюоресцеина. Введение большого количества флюоресцеина может скрыть мелкий эпителиальный дефект роговицы.
б. Осматривают роговицу с помощью лампы Вуда или другого источника синего света.
в. При обнаружении эпителиального дефекта роговицы возможно инфицирование роговицы. Необходима консультация офтальмолога.
г. При инфицировании вирусом герпеса у новорожденных чаще встречается эпителиальный дефект географической формы, чем в виде детрита.

2. Метод выворачивания век:
а. Верхнее веко:
(1) Захватывают реснички и край века большим и указательным пальцами нерабочей руки.
(2) Оттягивают веко книзу и на себя.
(3) В образовавшуюся выемку верхнего века закладывают аппликатор с хлопчатой головкой рабочей рукой и оттягивают веко кзади и кверху над аппликатором.
(4) Убирают аппликатор и удерживают веко на месте нерабочей рукой, осторожно прижимая край века к верхнему краю глазницы.

б. Нижнее веко:
(1) Помещают указательный палец нерабочей руки на край нижнего века.
(2) Оттягивают вниз.

3. Взятие мазка для посева.
Мазок для посева берут перед соскобом с конъюнктивы. Из каждого глаза берут отдельный мазок отдельным стерильным тампоном для каждого типа желаемого посева. Посев берут из каждого глаза, даже если поражен только один глаз. Неинфицированный глаз можно использовать как контрольный в отношении собственной микрофлоры конъюнктивы:

а. Следует подготовить смоченный альгинатом кальция тампон и триптиказо-соевый бульон или другую жидкую питательную среду.
б. Выворачивают веко.
в. Прикладывают тампон к конъюнктиве глаза и века и верхнему и нижнему конъюнктивальному мешку глаза.
г. Наносят материал тампоном на питательную среду в виде одного ряда С-образных полос сразу после забора. Рост микроорганизмов по ходу полос помогает в диагностике культивируемого патогенного микроорганизма.
д. Используют отдельный стерильный тампон для каждой чашки или пробирки с питательной средой.
е. Скрупулезно маркируют посевы: глаз (правый, левый) и часть глаза (конъюнктива, край века и т.д.).
ж. Сразу начинают инкубацию посевов.

4. Метод получения соскоба конъюнктивы для мазка и некультурального исследования для обнаружения хламидий:
а. Выворачивают веко, как описано выше.
б. Вводят местный анестетик в конъюнкти-вальный мешок (по желанию).
в. Тампоном удаляют излишнее отделяемое.
г. Берут соскоб на расстоянии 2 мм от края глаза. Нормальный ороговевающий эпителий с края века может изменить результаты мазка.
д. Проводят шпателем два или три раза в одном направлении, избегая кровотечения.
е. Осторожно наносят материал со шпателя на чистое предметное стекло в один слой и маркируют.
ж. Фиксируют мазки согласно требованиям лаборатории.
и. Повторяют процедуру на втором глазу отдельным стерильным шпателем.

Осложнения взятия материала с глаз для исследования

1. Кровотечение из конъюнктивы:
а. Легкое конъюнктивальное кровотечение обычно останавливается самостоятельно, но возникает часто.
б. Закладывают эритромициновую глазную мазь.

2. Повреждение роговицы:
а. Держат лезвие шпателя плоской стороной в конъюнктиве хряща века все время во избежание травмы роговицы.
б. Повреждение роговицы подтверждают путем окрашивания дефекта флюоресцеином.
в. Если произошло повреждение роговицы, закладывают эритромициновую глазную мазь и приглашают на консультацию офтальмолога.

3. Передача инфекции с инфицированного на не-инфицированный глаз. Во избежание этого осложнения следует использовать отдельные стерильные инструменты при заборе образцов с каждого глаза.
4. Раздражение глаза, боль, фотофобия, слезотечение, отек и гиперемия.
Симптомы проходят самостоятельно.

Источник: http://meduniver.com